為什么做實驗都用酒精不用白酒，為什么做皮試的時候不用酒精擦一下就直接進行皮內(nèi)試驗

是她忘了涂酒精了，一般只要是有創(chuàng)的操作都有消毒表皮的?？赡苣惚粋€忘性很大的護士…………

你好！易致局部皮膚發(fā)紅一般情況下皮試多采用75％酒精消毒局部皮膚表面，影響皮試觀察結(jié)果?？梢杂蒙睇}水替代，而酒精具有擴張血管的作用僅代表個人觀點，不喜勿噴，謝謝。

（1）①200；②225；（2）不能，理由見解析.試題分析：（1）①根據(jù)二次函數(shù)的最值求解即可.②根據(jù)點在曲線上點的坐標(biāo)滿足方程的關(guān)系，將（5，45）代入即可求得k的值．（2）求出時（即酒精含量等于20毫克／百毫升）對應(yīng)的x值（所需時間），推出結(jié)論．試題解析：（1）①當(dāng)時，，∴喝酒后1時血液中的酒精含量達到最大值，最大值為200毫克／百毫升.②∵當(dāng)時，，且（5，45）在反比例函數(shù)(k＞0)圖象上，∴把（5，45）代入得，解得.（2）把代入反比例函數(shù)得.∴喝完酒經(jīng)過11.25時（即11：20時）為早上7：20.∴第二天早上7：20以后才可以駕駛，7：00時不能駕車去上班.

無水乙醇的制備相當(dāng)復(fù)雜，操作困難，直接導(dǎo)致無水乙醇的價錢比95乙醇的價錢高好多，在是在這個實驗當(dāng)中，有專門的除水過程，5%的水對實驗沒有多大的影響！

也許是無水乙醇過于容易揮發(fā)，而制作乙酸乙酯要加熱，所以用95%乙醇

無水乙醇在價格上要比95%的乙醇貴很多，因此很多實驗室為了節(jié)約成本，就多半用95%的乙醇，當(dāng)然用無水乙醇也可以

最主要的原因是因為，無水乙醇價格高?；瘜W(xué)合成中對原料的要求并不高，用普通的化學(xué)純藥品即可，不需要純度更高的試劑純或分析純，95%乙醇價格便宜，易于制得。

70%～75％的酒精而不用純酒精消毒呢？這是因為酒精濃度越高，使蛋白質(zhì)凝固的作用越強。當(dāng)高濃度的酒精與 細(xì)菌接觸時，就能使菌體表面迅速凝固，形成一層包膜，阻止了酒精繼續(xù)向菌體內(nèi)部滲透。細(xì)菌內(nèi)部的細(xì)胞沒 能徹底殺死。待到適當(dāng)時機，包膜內(nèi)的細(xì)胞可能將包膜沖破重新復(fù)活。因此，使用濃酒精達不到消毒殺菌的目 的。如果使用70%～75％的酒精，既能使組成細(xì)菌的蛋白質(zhì)凝固，又不能形成包膜，能使酒精繼續(xù)向內(nèi)部滲透， 而使其徹底消毒殺菌。經(jīng)實驗，若酒精的濃度低于70％，也不能徹底殺死細(xì)菌

為什么不用純酒精消毒?酒精能滲入細(xì)菌體內(nèi)，使組成細(xì)菌的蛋白質(zhì)凝固。所以酒精在醫(yī)療衛(wèi)生上常用它作消毒殺菌劑。為什么用 70%～75％的酒精而不用純酒精消毒呢？這是因為酒精濃度越高，使蛋白質(zhì)凝固的作用越強。當(dāng)高濃度的酒精與 細(xì)菌接觸時，就能使菌體表面迅速凝固，形成一層包膜，阻止了酒精繼續(xù)向菌體內(nèi)部滲透。細(xì)菌內(nèi)部的細(xì)胞沒 能徹底殺死。待到適當(dāng)時機，包膜內(nèi)的細(xì)胞可能將包膜沖破重新復(fù)活。因此，使用濃酒精達不到消毒殺菌的目 的。如果使用70%～75％的酒精，既能使組成細(xì)菌的蛋白質(zhì)凝固，又不能形成包膜，能使酒精繼續(xù)向內(nèi)部滲透， 而使其徹底消毒殺菌。經(jīng)實驗，若酒精的濃度低于70％，也不能徹底殺死細(xì)菌

觀察根尖細(xì)胞的有絲分裂（95%酒精和15%鹽酸1：1混合形成的解離液）用卡諾氏液的那個實驗也需用上述的解離液還有提取葉片中色素需用無水乙醇觀察脂肪的實驗需用50%酒精去除浮色

觀察細(xì)胞中的油脂（蘇丹3染色），染色后用酒精洗去浮色。色素的提取分離，用酒精提?。ㄒ簿褪侨芙猓┥亍Ｓ^察洋蔥根尖細(xì)胞有絲分裂，酒精是解離固定液的主要成分之一。

色素的提取和分離實驗中用無水乙醇或體積分?jǐn)?shù)為95%的乙醇，作用是提取色素的。有絲分裂中解離液是鹽酸和酒精混合液1:1比例，作用是使組織中的細(xì)胞相互分離開來

葉綠體色素的提取和分離實驗中，作用是提取色素的；DNA的粗提取與鑒定實驗，酒精用于“DNA的析出”那一步，用于除去溶于酒精的蛋白質(zhì)（DNA不溶于酒精）；觀察根尖分生組織細(xì)胞的有絲分裂實驗，解離時用到的解離液是：質(zhì)量分?jǐn)?shù)為15%的HCl與體積分?jǐn)?shù)為95%的酒精，比例為1：1；低溫誘導(dǎo)植物染色體數(shù)目的變化實驗中，固定后用體積分?jǐn)?shù)為95%的酒精沖洗，解離時同上。

觀察根尖細(xì)胞的有絲分裂（95%酒精和15%鹽酸1：1混合形成的解離液）用卡諾氏液的那個實驗也需用上述的解離液還有提取葉片中色素需用無水乙醇觀察脂肪的實驗需用50%酒精去除浮色

那個研究葉子里的色素的時候是要用到的胡蘿卜素，葉黃素，葉綠素a，葉綠素B是可以溶解在酒精中的

直接免疫熒光實驗為什么加酒精免疫熒光細(xì)胞化學(xué)方法的原理是根據(jù)抗原抗體反應(yīng)的規(guī)律，把已知的抗原或抗體標(biāo)記上熒光素，制成熒光抗原或抗體，然后以它作為探針來檢測組織或細(xì)胞內(nèi)的相應(yīng)物質(zhì)。方法具體種類有直接法、間接法、夾心法和補體法等。1、冰凍切片制備：建議用新鮮組織，否則組織細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)破壞，易使抗原彌散。選用干凈鋒利的刀片、組織一定要冷凍適度等，防止裂片和脫片嚴(yán)重。2、組織切片固定：切好片風(fēng)干后立即用冰丙酮等固定液進行固定 5-10 min，尤其要較長時間保存的白片，一定要及時固定和適當(dāng)保存。3、血清封閉：為防止內(nèi)源性非特異性蛋白抗原的結(jié)合，需要在一抗孵育前先用血清（與二抗來源一致）封閉，減弱背景著色。血清封閉的時間是可以調(diào)整的，一般 10-30 min。4、一抗孵育條件：在免疫組化反應(yīng)中最重要，包括孵育時間和抗體濃度。一抗孵育溫度有幾種：4℃ 、室溫、37℃ ，其中 4℃ 效果最佳；孵育時間：這與溫度、抗體濃度有關(guān)，一般 37℃ 1-2 h，而 4℃ 過宿和從冰箱拿出后 37℃ 復(fù)溫 45 min。具體條件還要摸索。5、二抗孵育條件：二抗一般室溫或 37℃ 立即觀察，若將標(biāo)本放在聚乙烯塑料袋中 4℃ 30 min-1h，具體時間需要摸索，而濃度一般有工作液，若是濃縮液還要摸索濃度，切記要避光反應(yīng)。但在免疫熒光中我們一般先把二抗?jié)舛群头跤龝r間先定下，然后去摸索一抗?jié)舛群头跤龝r間。最后，熒光素標(biāo)記的二抗隨著保存時間的延長，可能后有大量的游離熒光素殘留，需要注意配制時小包裝和并進行適當(dāng)?shù)碾x心。6、復(fù)染：目的是形成細(xì)胞輪廓，從而更好地對目標(biāo)蛋白進行定位。一般常用 DAPI 復(fù)染。7、封片：為了長期保存，我們一般用緩沖甘油等封片，此外還有專門的抗熒光萃滅封片液。避免產(chǎn)生氣泡，方法是直接在載玻片組織上滴一滴封片液，然后一手拿住蓋片某一拐角，而另一手拿對面的那個拐角，接近封片液近端的拐角先降低，直至接觸到液體時為止；當(dāng)發(fā)現(xiàn)液體接觸面在不斷彌散時，則可以緩慢降低另一拐角，這樣一般不會產(chǎn)生氣泡。8、切片清洗：為了防止一抗、二抗等試劑殘留而引起非特異性染色，所以適當(dāng)?shù)丶訌娗逑矗ㄑ娱L時間和增多次數(shù)）尤為重要，我一般在一抗孵育前的清洗是 3 min*3 次，而一抗孵育后的清洗均為 5 次*5 min。注意：單獨沖洗，防止交叉反應(yīng)造成污染。溫柔沖洗，防止切片的脫落。我喜歡用浸洗方式；沖洗的時間要足夠，才能徹底洗去結(jié)合的物質(zhì)。PBS 的 pH 和離子強度的使用和要求。這方面我有慘痛教訓(xùn)，當(dāng)時我買的抗體稀釋液偏酸，結(jié)果背景一片黃（未見特異性染色），建議 pH 在 7.4-7.6 濃度是 0.01 M。（中性及弱堿性條件（pH7-8）有利于免疫復(fù)合物的形成，而酸性條件則有利于分解；低離子強度有利于免疫復(fù)合物的形成，而高離子強度則有利于分解）9、拍照：有條件的話最好立即拍照，若不能及時拍照，也要封好片和用指甲油封固，保持避光和濕度。使用熒光顯微鏡注意嚴(yán)格按照熒光顯微鏡出廠說明書要求進行操作，不要隨意改變程序；應(yīng)在暗室中進行檢查；防止紫外線對眼睛的損害，在調(diào)整光源時應(yīng)戴上防護眼鏡；檢查時間每次以1~2 h 為宜，超過 90 min，超高壓汞燈發(fā)光強度逐漸下降，熒光減弱；標(biāo)本受紫外線照射 3~5 min 后，熒光也明顯減弱或褪色；激發(fā)光長時間的照射，會發(fā)生熒光的衰減和淬滅現(xiàn)象；所以最多不得超過 2~3 h；熒光顯微鏡光源壽命有限，標(biāo)本應(yīng)集中檢查，以節(jié)省時間，保護光源。天熱時，應(yīng)加電扇散熱降溫，新?lián)Q燈泡應(yīng)從開始就記錄使用時間。燈熄滅后欲再啟用時，須待燈光充分冷卻后才能點燃。一天中應(yīng)避免數(shù)次點燃光源。關(guān)閉汞燈至少在開啟 15-30 分鐘后；標(biāo)本染色后立即觀察，因時間久了熒光會逐漸減弱。若將標(biāo)本放在聚乙烯塑料袋中 4℃ 保存，可延緩熒光減弱時間，防止封裱劑蒸發(fā)；使用的玻片等載體，都必須厚度均勻，無明顯的自發(fā)熒光，如果使用油鏡，還必須保證鏡油為無熒光鏡油；電源最好裝穩(wěn)壓器，否則電壓不穩(wěn)不僅會降低汞燈的壽命，也會影響鏡檢的效果。

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